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QuantStudio™ 3實時熒光定量PCR系統的標準操作流程。請注意,本指南為通用操作流程,在進行任何實驗前,請務必詳細閱讀儀器和試劑的使用說明書,并嚴格遵守您所在實驗室的安全規范。
一、賽默飛QuantStudio 3 qPCR系統標準操作流程
儀器操作與運行程序
1、啟動軟件:
雙擊桌面上的“QuantStudio™ Design & Analysis Software"圖標啟動軟件。
2、創建新實驗:
點擊 “New Experiment" 或 “Create New"。
實驗類型: 選擇 “Quantitation (標準曲線定量)", “Comparative Ct (ΔΔCt法)", “Melt Curve (熔解曲線)" 等,根據您的實驗目的選擇。
檢測化學物質: 選擇 “SYBR Green" 或 “TaqMan Probe"。
模板選擇: 可以選擇空白模板或從已有實驗導入板布局。
3、設置板布局:
在軟件界面顯示的虛擬96孔板上,用鼠標選中孔位。
在右側屬性欄中,為每個孔或一組孔定義:
Sample Name(樣品名稱): 如 Sample1, Control 等。
Task(任務): Unknown(未知樣品), Standard(標準品), NTC(無模板對照)等。
Reporter(熒光染料): 通常是FAM(SYBR Green或TaqMan探針),如果您使用多通道檢測,還需選擇其他染料如VIC, ROX等。
Quencher(淬滅基團): 軟件通常會自動匹配,如MGB/NBQ。
Quantity(濃度): 僅對標準品(Standard)需要輸入已知濃度,用于制作標準曲線。
4、編輯運行程序:
點擊 “Assign Targets & Samples" 后,進入 “Run Method" 界面。
點擊 “Edit" 編輯熱循環程序。一個典型的qPCR程序包含以下步驟:
階段1:預變性/UNG酶孵育(可選)
目的:激活熱啟動酶,或使用UNG酶防止殘留污染。
條件:50°C for 2 min (UNG酶作用), 95°C for 2-10 min(酶激活)。
階段2:PCR循環(40-45個循環)
變性: 95°C for 5-15 seconds。
退火/延伸: 60°C for 30-60 seconds(在此步驟采集熒光信號)。
注意: 退火溫度和時間需根據您的引物和預混液說明書進行優化。對于SYBR Green法,通常在退火/延伸結束時采集信號。
階段3:熔解曲線分析(SYBR Green法)
目的:確認擴增產物的特異性。
條件:95°C for 15 seconds -> 60°C for 1 min -> 緩慢升溫至95°C(例如,每升高0.3°C采集一次熒光信號)。
5、運行實驗:
程序設置完成后,點擊 “Start Run" 或 “Run"。
軟件會提示您放置反應板。打開儀器機蓋,將反應板放入樣品槽,確保板子方向正確(A1孔在左上角),然后關閉機蓋。
在彈出窗口中確認板子位置,點擊 “OK" 開始運行。
軟件會實時顯示擴增曲線和反應進度。
二、賽默飛QuantStudio3實時熒光定量PCR數據分析與關機
1、數據分析:
運行結束后,軟件會自動跳轉到分析界面。
設置基線閾值和Ct值: 軟件通常會自動設置,但您可能需要手動調整基線范圍(Baseline)和閾值線(Threshold),以確保所有擴增曲線的Ct值計算準確。
查看結果: 軟件會給出每個孔的Ct值。您可以根據實驗類型查看結果:
標準曲線法: 軟件會生成標準曲線,并自動計算未知樣品的拷貝數。
ΔΔCt法: 軟件可幫助計算相對于內參基因和對照組的基因表達相對倍數。
熔解曲線: 查看熔解峰是否為單一尖銳峰,以確認擴增特異性。
導出數據: 可以將結果導出為Excel或CSV格式進行進一步處理。
2、關機:
數據分析完成后,保存實驗文件。
退出QuantStudio軟件。
關閉電腦。
通常情況下,QuantStudio 3主機無需關閉電源,以保持內部溫度穩定并利于光學元件的保養。如果長期不用(如超過一周),可關閉主機背后電源開關。
清理實驗臺面,妥善處理生物廢棄物。
三、重要注意事項與日常維護
1、避免污染: qPCR極其敏感。配制反應液和加模板的區域應分開,勤換手套,使用帶濾芯的槍頭。
2、反應體系均一性: 確保反應液混合均勻,避免產生氣泡,氣泡會影響熒光信號的讀取。
3、程序優化: 使用的引物應進行退火溫度梯度實驗和引物濃度優化。
4、儀器維護: 定期用柔軟的濕布清潔儀器表面和樣品槽。如果發現信號異常,可運行儀器自帶的光學校準程序(在軟件工具菜單中)。
5、ROX參比染料: 某些預混液需要添加ROX染料作為內參校正孔間誤差,請根據您的預混液說明書決定是否需要在程序設置中選擇“ROX"作為被動參比染料。